MM_FS_CNJ_0132 出口肉及肉制品中红霉素残留量检验方法

MM_FS_CNJ_0132出口肉 肉制品 禽肉 红霉素 残留量 杯碟法

MM_FS_CNJ_0132

     出口肉及肉制品中红霉素残留量检验方法

1.适用范围

    本方法适用于出口禽肉中红霉素残留量的检验。

2.原理概要

    利用被测定样液中的残留红霉素与藤黄微球菌作用，产生抑菌圈。试样用20%的甲醇-二甲氧基甲烷溶液提取。提取液经离心浓缩后，溶于缓冲溶液(pH8.0)中并定容，用杯碟法测定，对照红霉素标准曲线定量。

3.主要试剂和仪器

3.1.主要试剂

    红霉素标准品：由卫生部药品生物制品检定所提供；

    二甲氧基甲烷[CH₂(COCH)₂]：化学纯；

    磷酸盐缓冲液(pH8.0)：0.1mol/L，称取16.73g无水磷酸氢二钾及0.53g无水磷酸二氢钾，溶于水，定容至1000mL；

    试验菌种：藤黄微球菌(Micrococcusluteus)，菌株号28001；

    红霉素标准储备液：准确称取一定量红霉素标准品(精确至0.10mg)，用二甲氧基甲烷溶液，使红霉素液的浓度为1000μg/mL，再用磷酸盐缓冲液(pH8.0)稀释，使最终浓度为100μg/mL，保存于4℃冰箱备用(不宜超过一周)；

    红霉素标准工作液：取上述储备液用磷酸盐缓冲液稀释，配制成0.025，0.05，0.10，0.20，0.40，0.80μg/mL的标准工作液，作为制备标准曲线的标准工作液。需当天配制，当天使用；

    肉汤培养基(见附录A中A1)；

    菌种培养基(见附录A中A2)；

    检定培养基(见附录A中A3)。

3.2.仪器

    培养皿：内径90mm，底部平整、光滑的玻璃皿或塑料皿，具陶瓦盖；

    牛津杯：外径(7.8±0.1)mm，内径(6.0±0.1)mm，高(10±0.1)mm的不锈钢管；

    游标卡尺：测量范围0～200mm，精度0.02mm；

    绞碎机：电动；

    均质器：不低于10000r/min，带均质杯(300mL)；

    离心机：不低于4000r/min；

    水浴锅：0～60℃±1℃；

    恒温培养箱：(35±1)℃；

    高压灭菌器；

    其他：玻璃器皿。

4.试样的抽取与制备

4.1.检验批

    以不超过2500件为一检验批。

    同一检验批的产品应具有相同的特征，如包装、标记、产地、规格和等级等。

4.2.抽样数量

4.3.抽样方法

    按规定的抽样件数随机抽取，逐件开启。每件至少取一袋作为原始样品，抽取原始样品的总量不少于2kg，如每件中无小包装或有小包装，但每袋小包装重量超过2kg者，可用灭菌刀具从抽出的包件中，每件割取不少于100g，混合后，置于清洁容器内，作为原始试样，混合的试样总量不少于2kg，加封后，标明标记，及时送交实验室。

4.4.试样的制备

    从取回的原始样品中取出部分样品，将可食部分放入绞碎机内绞碎，充分混匀，用四分法缩分至不少于500g，作为试样，装入清洁容器内，加封后标明标记。

4.5.试样保存

    将试样于－18℃以下冷冻保存。

注：在抽样及制样的操作过程中，必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。

5.过程简述

5.1.试液制备

    准确称取20.0g样品于均质杯内，加入50mL20%甲醇-二甲氧基甲烷溶液，9000r/min，均质2min，移入离心管4000r/min，离心10min，将上清液移入100mL容量瓶中(视情况过滤)。试样再分别用20%甲醇-二甲氧基甲烷如上法提取两次，将上清液合并，用甲醇-二甲氧基甲烷定容至100mL。用移液管吸取10mL提取液至试管中，置于40℃水浴，通以氮气吹干，取出试管，加磷酸盐缓冲液，溶解残渣并定容至2mL，作为样液。

5.2.菌液的制备

    将菌种接种于肉汤培养基内，置(35±1)℃培养(24±2)h。再转种到菌种培养基斜面上，置(35±1)℃培养16～18h后，加入3mL肉汤培养基，洗下菌苔，吸取1mL此菌液转种至克氏瓶中菌种培养基的表面，置(35±1)℃培养(24±2)h。用15mL灭菌生理盐水洗下琼脂表面的菌苔，制成菌悬液，置4℃冰箱保存(可保存二周)。

5.3.菌液用量测定

    测试前应先用0.05μg/mL红霉素标准工作液对该菌液浓度的平板进行预测试，经培养后，其标准工作液所呈现的抑菌圈直径在10mm以上时，则该菌液浓度即可使用，否则应调整菌液至合适的浓度。

5.4.检定平板的制备

    于无菌平皿中加入10mL融化的测试培养基，保持水平，待其凝固。再吸取加有菌液的该培养基4mL注入上述基层培养基上，保持水平，待其凝固后，在每个平板的表面放置6个牛津杯，使牛津杯在半径为2.8cm的圆面上成60°角间距，所用平板需当天制备。

5.5.标准曲线的制备

    以0.10 μg/mL浓度的标准工作液作为参考浓度。每个标准工作液浓度取3个检定平板为一组，在每个检定平板上的其中3个牛津杯内加满参考浓度溶液，另3个牛津杯内加满标准工作液，参考浓度溶液与标准工作液要间隔放置，5个标准浓度共15个检定平板，含量最低的标准浓度0.025 μg/mL的3个检定平板作为判断阴性结果的对照，其他12个检定平板用来绘制标准曲线。这样参考浓度0.10 μg/mL的工作液将得出45个抑菌圈直径的数值，而其他的标准浓度将得出9个抑菌圈的数值。

    将陶瓦盖盖好，置35℃培养(18±1)h，翻转平板，除去牛津杯，精确地测量产生的抑菌圈直径(精确到0.1mm)，求出每组3个检定平板上0.10μg/mL浓度的抑菌圈直径读数与其他标准浓度的抑菌圈直径读数的平均值，再求出参考浓度0.10μg/mL的所有45个抑菌圈直径数值的平均值，用45个参考浓度抑菌圈直径的平均值与每组中9个参考浓度抑菌圈直径平均值之差来校正其他各标准浓度的抑菌圈读数的平均值。

    将这些校正后的值，包括0.10μg/mL浓度的平均值在半对数坐标纸上，以抑菌圈直径为纵坐标(算术级)，以μg/mL计的浓度为横坐标(对数级)，通过式(1)和式(2)的L和H点绘出最佳直线。

L＝(3a＋2b＋c－e)/5 …………………………(1)

H＝(3e＋2d＋c－a)/5 …………………………(2)

式中：L——标准曲线上的最低浓度(0.05μg/mL)抑菌圈直径，mm；

H——标准曲线上的最高浓度(0.8μg/mL)抑菌圈直径，mm；

c——参考浓度0.1 μg/mL的45个抑菌圈直径的平均值，mm；

a、b、d、e——分别表示标准曲线中其他标准浓度(0.05、0.20、0.40、0.80μg/mL)的抑菌圈直径经校正后的平均值，mm。

5.6.样液的测定

    每份样液取3个检定平板，在每个检定平板上3个间隔的牛津杯内加满红霉素标准参考浓度溶液，另外3个牛津杯内加满被检样液，将陶瓦盖盖好，置35℃培养(18±1)h，翻转平板，除去牛津杯，如有抑菌圈产生，精确测量其直径。

6.结果计算

    如样液抑菌圈的直径小于10mm，即报告为未检出。如抑菌圈的直径大于等于10mm，经校正后，从标准曲线上查出相应的红霉素的含量，得出结果以μg/mL计。

如果样品中红霉素含量的单位用mg/kg表示时，可将μg/mL按照式(3)进行换算：

式中：X——样品中红霉素的含量，mg/kg；

c——从标准曲线上查出的样液红霉素浓度，μg/mL；

m——最终试液所代表的试样量，g/mL。

注：如测定结果呈阳性，即所显抑菌圈的平均直径大于等于10mm时，必要时，尚需进行确准试验(可用薄层层析法)。

7.低限和回收率的测定

7.1.测定低限

    本方法的测定低限为0.05mg/kg。

7.2.回收率

    本方法的回收率数据：

红霉素添加浓度为0.05μg/g，回收率为78.27%；

红霉素添加浓度为0.10μg/g，回收率为80.28%；

红霉素添加浓度为0.20μg/g，回收率为86.14%。

8.来源：

    SN  0537—1996